• Langue : Français, Anglais
• Discipline : Physiologie, Biologie des organismes, populations, interactions
• Identifiant : 2024ULILS110
• Type de thèse : Doctorat
• Date de soutenance : 03/12/2024

Résumé en langue originale

L'amidon et le glycogène sont les principaux polysaccharides de réserve chez les organismes vivants. Bien qu'ils soient tous deux composés de chaînes de glucose liées en α-1,4 et ramifiées en α-1,6, leurs propriétés physico-chimiques diffèrent en raison d'une distribution différente des points de ramification. L'amidon, cristallin, permet de stocker de grandes quantités de glucose. Il est uniquement présent chez les eucaryotes dérivés de l'endosymbiose plastidiale, notamment les Archaeplastida, et sa synthèse est toujours associée à des activités enzymatiques spécifiques. Cependant, l'accumulation d'amidon se retrouve aussi chez certains Alveolata comme les Dinoflagellés, les Chroméridés et les Apicomplexes (que l'on regroupe sous le nom de Myzozoa), issus d'une endosymbiose impliquant une algue rouge unicellulaire. Jusqu'à présent, les analyses fonctionnelles se sont surtout concentrées sur les Chloroplastida, identifiant des enzymes clés comme l'isoamylase, nécessaire à la cristallisation de l'amidon, ou certaines amidon-synthases spécifiques impliqués dans l'initiation de la synthèse de l'amidon. Or, des analyses métaboliques comparatives in silico montrent que les Myzozoa accumulateur d'amidon n'ont pas les gènes codant ces enzymes. On ignore quels sont les acteurs de la cristallisation des polysaccharides de réserve chez ces organismes, et si la synthèse de l'amidon nécessite une synthase spécifique, comme chez les plantes.Pour élucider comment l'amidon s'accumule chez ces organismes, nous avons étudié Chromera velia, un organisme unicellulaire photosynthétique ayant une place évolutive unique dans l'arbre du vivant, proche des dinoflagellés et des apicomplexes. Ce chemin évolutif fait de C. velia un modèle idéal pour étudier les mécanismes et l'évolution du métabolisme de l'amidon chez les Alveolata. Nous avons donc généré 95 mutants de C. velia déficients dans la synthèse d'amidon par mutagenèse aléatoire aux UV. Un séquençage ciblé a révélé des allèles distincts affectant le gène Cvel_2560, qui code une protéine atypique encore non caractérisée à ce jour. Cette enzyme, appelée protéine « fusion », possède un domaine enzyme de branchant GH13_8 interrompu par un domaine synthase GT4 de fonction inconnue — une disposition inhabituelle conservée chez les Myzozoa accumulant de l'amidon.L'activité de Cvel_2560 a été évaluée grâce à une approche intégrative incluant la modélisation in silico de cette protéine, le phénotypage des mutants, l'analyse phylogénétique et l'enzymologie de protéines recombinantes. La modélisation suggère que le domaine GH13, bien que divisé en deux partie, semble se reformer lors de la mise en conformation de la protéine, suggérant que ce domaine soit bien actif. Les mutants de C. velia impacté dans Cvel_2560 montrent des déficiences importantes dans la production d'amylopectine et de polysaccharides solubles. La caractérisation structurale des polysaccharides solubles accumulés chez ces mutants, comparée à l'amylopectine des souches sauvages et de certains mutants, révèle qu'ils adoptent une structure atypique ressemblant au glycogène. Les analyses biochimiques préliminaires sur des protéines recombinantes montrent que Cvel_2560 présente une activité en présence d'UDP-glucose. Enfin, l'analyse phylogénétique indique que cette protéine est commune à tous les Myzozoa, le domaine GT4 ayant été hérité lors de l'endosymbiose secondaire, tandis que le domaine GH13 aurait une origine eucaryote, et aurait évolué pour fonctionner de paire avec le domaine GT4.Ces résultats suggèrent que la perturbation de ce gène altère la voie de synthèse des polysaccharides, entraînant l'accumulation de polymères solubles semblables au glycogène à la place de l'amylopectine. Bien que la fonction enzymatique précise de cette protéine reste encore à déterminer, les résultats suggèrent son implication dans les premières étapes de l'assemblage ou de la ramification des polysaccharides de réserve chez C. velia.

Résumé traduit

Starch and glycogen are the primary storage polysaccharides in living organisms, representing two states of the same type of polysaccharide. Although both consist of α-1,4-linked and α-1,6-branched glucose chains, their physicochemical properties differ due to varying branching distributions. Starch, which is crystalline and allows for substantial glucose storage, is found only in eukaryotes derived from plastid endo-symbiosis, particularly in Archaeplastida, and has always been associated with specific enzymes. However, starch accumulation also occurs in some Alveolata, such as Dinoflagellates, Chromerids, and Apicomplexan parasites (all belonging to the Myzozoa group), which resulted from endosymbiosis involving a eukaryotic alga rather than cyanobacteria. Previous functional analyses primarily focused on Chloroplastida, identifying key enzymes like isoamylase and specific starch synthases necessary for starch crystallization and initiation. Comparative in silico metabolic analyses reveal that many eukaryotes, especially Myzozoa, lack genes encoding these enzymes. Thus, it remains unclear whether starch synthesis initiation requires specific starch synthases as in plants.To elucidate starch accumulation in these organisms, we investigate Chromera velia, a unicellular photosynthetic organism with a unique evolutionary position, closely related to both dinoflagellates and apicomplexans. Its distinct lineage makes C. velia an ideal model for studying carbohydrate metabolism mechanisms in Alveolata. We generated a collection of 95 UV-induced C. velia mutants deficient in starch synthesis. Targeted sequencing revealed distinct alleles altered in carbohydrate metabolism genes, particularly in the atypical gene Cvel_2560, encoding a previously uncharacterized “fusion” protein. This enzyme features a GH13_8 branching enzyme domain interrupted by a GT4 synthase domain of unknown function—an unusual arrangement conserved among starch-accumulating Myzozoa.We assessed the activity of Cvel_2560 using an integrative approach, including in silico protein modeling, mutant phenotyping, phylogenetic analysis, and enzymology of recombinant proteins. Modeling suggests that the GH13 domain, despite being split, likely reforms during tertiary folding, indicating its potential functionality. C. velia mutants with Cvel_2560 disruptions exhibit significant deficiencies in amylopectin and soluble polysaccharide production. Structural characterization of these soluble polysaccharides, compared to crystalline amylopectin in wild-type and certain mutants, reveals an atypical structure resembling glycogen. Preliminary biochemical analyses of recombinant proteins indicate Cvel_2560 exhibits activity with UDP-glucose. Phylogenetic analysis reveals this protein is common to all Myzozoa and that the GT4 do-main was inherited during secondary endosymbiosis, while the GH13 domain has a eukaryotic origin, evolving to function alongside the GT4 domain.These findings suggest that gene disruption alters the polysaccharide synthesis pathway, leading to glycogen-like polymer accumulation instead of typical starch. Although the precise enzymatic function of Cvel_2560 remains unknown, data support its involvement in early polysaccharide assembly or branching in C. velia.